Tomato seeds (Lycopersicon esculentum) var. ‘Campbell’ were disinfect的繁体中文翻译

Tomato seeds (Lycopersicon esculent

Tomato seeds (Lycopersicon esculentum) var. ‘Campbell’ were disinfected with 5% commercial bleach for 1 min then rinsed with sterile distilled water (SDW) and inoculated with bacterial isolates at a concentration of 108 CFU mL− 1 during 30 min. Un-inoculated control seeds were similarly treated with SDW. After inoculation, seeds were sown in trays containing the peat. Fifteen days after germination, 10 plants per replicate were transplanted into plastic bags containing 2/3 peat and 1/ 3 sand. The length of the stem and the number of leaflets were measured weekly and only data for the 5th week were reported. The germination rate was calculated on the 7th day as follow:% germination = (number of germinated seeds / total number of seeds)* 100. Vigor index was determined as germination rate multiplied by stem length measured on the 5th week. The roots were also weighed on the same date; they were carefully removed and rinsed with water to eliminate traces of soil and then weighed to obtain the root fresh weight. Leaf samples were also taken from three plants and the leaf area was determined from 30 leaves using Mesurim software at http://acces. ens-lyon.fr/acces/logiciels/mesurim (J.F. Madre ENS Lyon, France). The amount of chlorophylls a and b was determined from leaves in triplicates according to method of Lichtenthaler (1987). As biochemical parameters associated with growth nitrate reductase activity and proline content were determined in three replicates. Nitrate reductase (NR, EC 1.6.6.1) activity was assayed in leaves of 5 weeks old tomato plants as described in Smaili et al. (2018) by measuring nitrite production in 300 mg of leaves subjected to vacuum infiltration with buffered nitrate solution consisting of 20 mM KNO3, 1% isopropanol, and 100 mM K2HPO4 and adjusted to pH 7.2. Plant tissues were then incubated in the buffer for 1 h at 28 ◦C in the dark. After incubation, the reaction was stopped by the addition of 0.2% sulphanilamide solution prepared in 3 N HCl and 0.02% N-(1-naphthyl) ethylenediamine dichloride. Coloration was allowed to develop during 15 min and the absorbance was determined at 540 nm. NR activity was calculated on the basis of a calibration curve using KNO2 as a standard. The results were expressed as the amount of nitrite synthesized in mmol per gram of fresh weight per hour. Proline was determined from leaves of 5 weeks old tomato plants according to the modified method of Bates et al. (1973). Three hundred mg of leaves were extracted with 3 mL of 40% methanol by heating at 100 ◦C for 45 min. After cooling and centrifugation at 5000 x g for 15 min, 1 mL of the supernatant was added to 1 mL of acetic acid solution containing 25 mg of ninhydrin and 1 mL of a mixture of orthophosphoric acid and 6 M glacial acetic acid (3v/2v). The reaction was heated for 20 min and after cooling, the chromophore was extracted with toluene and warmed to room temperature and then the absorbance was recorded at 528 nm. Proline content was determined using l-proline as a standard.
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番茄種子(Lycopersicon esculentum)變種。'Campbell' 用 5% 商業漂白劑消毒 1 分鐘,然後用無菌<br>蒸餾水 (SDW)沖洗,並在 30 分鐘內接種濃度為 108 CFU mL-1 的細菌分離物。未接種的對照種子<br>同樣用 SDW 處理。接種後,將種子播種在<br>裝有泥炭的托盤中。發芽後 15 天,將每個<br>重複的10 株植物移植到含有 2/3 泥炭和<br>1/3 沙子的塑料袋中。<br>每週測量莖的長度和小葉的數量,僅報告第 5 週的數據。<br>第 7 天的發芽率計算如下:%<br>發芽=(發芽種子數/種子總數)* <br>100。活力指數由發芽率乘以<br>第5週測得的莖長確定。根也在<br>同一天稱重;它們被小心地取出並用水沖洗以<br>去除土壤痕跡,然後稱重以獲得根鮮重。<br>葉樣品也取自<br>三株植物,並使用 http://acces 上的 Mesurim 軟件從 30 片葉子中確定葉面積。<br>ens-lyon.fr/acces/logiciels/mesurim(JF Madre ENS 里昂,法國)。根據 Lichtenthaler (1987) 的方法,<br>從<br>一式三份的葉子中測定葉綠素 a 和 b 的量。<br>與生長硝酸還原酶<br>活性和脯氨酸含量相關的生化參數以三個重複進行測定。如 Smaili 等人所述,在<br>5 週齡<br>番茄植株的葉子中測定硝酸還原酶(NR,EC 1.6.6.1)活性。(2018) 通過<br>使用<br>由 20 mM KNO3、1% 異丙醇<br>和 100 mM K2HPO4 組成並調節至 pH 7.2 的緩衝硝酸鹽溶液測量300 mg 葉子中亞硝酸鹽的產量進行真空滲透。然後<br>將植物組織在 28°C 的緩衝液中避光孵育 1 小時。孵育後,通過加入<br>在 3 N HCl 和 0.02% N-(1-萘基) 乙二胺中製備的 0.2% 磺胺溶液終止反應<br>二氯化物。在 15 分鐘內顯色並<br>在 540 nm 處測定吸光度。<br>基於使用 KNO2 作為標準的校準曲線計算 NR 活性。結果<br>表示為<br>每小時每克鮮重合成的亞硝酸鹽量,單位為毫摩爾。根據 Bates 等人的改進方法,<br>從 5 週齡番茄植株的葉子中測定脯氨酸<br>。(1973)。三百<br>毫克葉片通過在加熱用3mL 40%甲醇萃取<br>100◦C45分鐘。冷卻並以 5000 xg 離心 15<br>分鐘後,將 1 mL 上清液加入到 1 mL<br>含有 25 mg 茚三酮和 1 mL 正磷酸混合物的乙酸溶液中。<br>酸和 6 M 冰醋酸 (3v/2v)。將反應加熱 20<br>分鐘,冷卻後,用甲苯萃取生色團併<br>升溫至室溫,然後在<br>528 nm 處記錄吸光度。脯氨酸含量使用 l-脯氨酸作為標準測定。
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“Campbell”蕃茄種子(Lycopersicon esculentum)變種用5%商用漂白劑處理1分鐘,然後用無菌水沖洗<br>蒸餾水(SDW)並接種濃度為108 CFU mL的細菌分離物− 1在30分鐘內。未接種的對照種子<br>用SDW進行同樣的治療。接種後,將種子播種在土壤中<br>盛泥炭的託盤。發芽15天后,每株10株<br>將複製品移入含有2/3泥炭和1/4泥炭的塑胶袋中<br>3.沙子。量測莖的長度和小葉的數量<br>每週和僅報告第5周的數據。<br>第7天的發芽率計算如下:%<br>發芽率=(發芽種子數/種子總數)*<br>100活力指數為發芽率乘以莖幹<br>第5周量測長度。根也被壓在地上<br>同一日期;它們被小心地移走,並用水沖洗乾淨<br>清除土壤痕迹,然後稱重以獲得根鮮重。<br>還從三種植物中採集了葉片樣本,並量測了葉片面積<br>使用Mesurim軟件在http://acces. <br>ens-lyon.fr/acces/logiciels/mesurim(法國里昂馬德雷)。<br>葉綠體a和b的含量是從植物葉片中測定的<br>根據Lichtenthaler(1987)的方法,一式三份。<br>作為與生長硝酸還原酶相關的生化參數<br>在三個重複中測定活性和脯氨酸含量。硝酸鹽<br>測定了5周齡葉片的還原酶(NR,EC1.6.6.1)活性<br>如Smaili等人(2018)所述,通過量測亞硝酸鹽來種植蕃茄植物<br>用真空滲透法生產300 mg葉片<br>緩衝硝酸鹽溶液,由20 mM硝酸鉀和1%异丙醇組成,<br>和100 mM K2HPO4,並調節至pH 7.2。植物組織在那時被分離<br>在緩衝液中於28℃孵育1小時◦C在黑暗中。培養後,通過添加0.2%磺胺溶液停止反應<br>在3 N HCl和0.02%N-(1-萘基)乙二胺中製備<br>二氯化物。允許在15分鐘內形成著色,並且<br>在540nm處測定吸光度。硝酸還原酶活性是根據<br>以KNO2為標準的校準曲線的基礎。結果<br>表示為每克水合成亞硝酸鹽的量,組織為mmol<br>每小時鮮重。<br>測定了5周齡蕃茄植株葉片中的脯氨酸<br>根據Bates等人(1973)的改進方法。三百<br>通過在溫度下加熱,用3 mL 40%甲醇選取mg葉片<br>100◦冷卻45分鐘,並在5000 x g下離心15分鐘<br>分鐘後,將1毫升上清液添加到1毫升醋酸溶液中<br>含25毫克茚三酮和1毫升正磷酸鹽混合物<br>酸和6 M冰醋酸(3v/2v)。反應加熱20分鐘<br>分鐘後,冷卻後,用甲苯和乙醇選取生色團<br>加熱至室溫,然後在室溫下記錄吸光度<br>528納米。以l-脯氨酸為標準測定脯氨酸含量。<br>
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番茄種子 (番茄籽) var. "坎貝爾" 用 5% 的商業漂白劑消毒 1 分鐘, 然後用無菌沖洗蒸餾水 (SDW) 並在 30 分鐘內以 108 CFU mL+ 1 的濃度與細菌隔離接種。未接種控制種子同樣對待與 Sdw 。接種后,種子被播種裝有泥炭的托盤。發芽15天后,每株10株複製被移植到塑膠袋中,裡面裝著2/3泥炭和1/3 沙子。測量了莖的長度和傳單的數量每周只報告第 5 周的數據。發芽率在第7天計算如下:%發芽 = (發芽種子數量 / 種子總數)*100. 活力指數被確定為發芽率乘以莖長度測量在第5周。根也被壓在同一日期;他們被小心地刪除和沖洗與水消除土壤的痕跡,然後稱重,以獲得根新鮮重量。還從三種植物中採集了葉子樣本,葉片面積為從 30 葉使用默蘇林軟體確定在 http://acces。ens-lyon.fr/acces/logiciels/mesurim(法國里昂馬德雷·恩斯)。葉綠素 a 和 b 的量是從葉子中確定的根據利希特塔勒的方法(1987年)進行三重切合。作為與生長硝酸鹽還原酶相關的生化參數活動和臨線內容在三個複製中確定。硝酸鹽還原酶 (NR, EC 1.6.6.1) 活動在 5 周大的葉子中進行測定斯梅利等人(2018年)通過測量亞硝酸鹽來描述番茄植物生產在300毫克的葉子受到真空滲透與緩衝硝酸鹽溶液,由20mM KNO3,1%的同丙酚組成,和 100 mM K2HPO4 並調整為 pH 7.2。植物組織當時在緩衝區孵育 1 小時, 在黑暗中 28 + C 。孵化后,通過添加0.2%硫化物溶液停止了反應在 3 N HCl 和 0.02% N (1- 納夫基) 乙烯胺中準備二氯化物。著色被允許在15分鐘內發展和吸收確定為540nm。NR 活動計算在以 KNO2 為標準的校準曲線的基礎。結果表示為硝酸鹽合成量在mmol每克每小時新鮮重量。蛋白因是由5周大的番茄植物的葉子決定的根據貝茨等人的修改方法(1973年)。三百毫克葉子通過加熱提取 3 mL 的 40% 甲醇100 ±C 45 分鐘。冷卻和離心后在 5000 x g 15最小,1 mL 的超納坦被添加到 1 mL 的醋酸溶液含有25毫克寧海德林和1 mL的矯高混合物酸和6M冰川醋酸(3v/2v)。反應被加熱了20年分鐘和冷卻后,染色體提取與甲苯和加熱到室溫,然後吸收記錄在528奈米使用 l-proline 作為標準確定臨線內容。
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